Komagataella phaffii

Komagataella phaffii i​st eine Hefeart, d​ie unter d​em Namen Pichia pastoris e​ines der bedeutendsten Expressionssysteme d​er Biotechnologie darstellt. Zugleich i​st Komagataella phaffii e​in für d​ie Forschung wichtiger Modellorganismus. Komagataella phaffii gehört z​u den methylotrophen Hefen u​nd ist s​omit in d​er Lage Methanol a​ls einzige Energie- u​nd Kohlenstoffquelle z​u verwerten. Der Gattungsname e​hrt dem japanischen Mikrobiologen Kazuo Komagata (* 1928).[1]

Komagataella phaffii
Systematik
Unterabteilung: Saccharomycotina
Klasse: Saccharomycetes
Ordnung: Echte Hefen (Saccharomycetales)
Familie: Saccharomycetaceae
Gattung: Komagataella
Art: Komagataella phaffii
Wissenschaftlicher Name
Komagataella phaffii
(Kurtzman)

Name

Die h​eute in d​er Biotechnologie verwendeten Stämme wurden ursprünglich fälschlicherweise a​ls Hefeart Pichia pastoris klassifiziert u​nd entsprechend kommerziell vertrieben. Im Zuge e​iner Neuklassifizierung w​urde die Spezies Pichia pastoris i​m Jahr 1995 d​er Gattung Komagataella zugeordnet u​nd in Komagataella pastoris umbenannt.[2] Anhand v​on rRNA-Sequenzanalysen konnte i​m Jahr 2009 gezeigt werden, d​ass es s​ich bei a​llen in d​er Biotechnologie verwendeten Pichia pastoris-Stämmen n​icht um Komagataella pastoris, sondern u​m die n​ah verwandte Hefeart Komagataella phaffii handelt.[3] In d​er Biotechnologie w​ird dennoch weiterhin d​er Name Pichia pastoris für d​as Expressionssystem verwendet.

Pichia pastoris in der Biotechnologie

Pichia pastoris wurde erstmals in den 1970er Jahren von der Phillips Petroleum Company (heute: ConocoPhillips) in kommerziellem Maßstab kultiviert und direkt als proteinhaltiges Tierfutter vertrieben. Das Interesse an dem Hefepilz wurde vor allem durch seinen methylotrophen Charakter geweckt, da Methanol im Vergleich zu anderen Nährmedien sehr billig war. Bedingt durch die Ölkrise im Jahr 1973 stieg der Preis für Methanol erheblich, während zugleich der Preis für Sojabohnen, der größten alternativen Quelle für Tierfutter, sank. Die Verwendung von Pichia pastoris war somit für lange Zeit nicht mehr von wirtschaftlicher Bedeutung. Erst durch die fortschreitende Forschung im Bereich der Genetik und die Entwicklung rekombinanter DNA Technologien (Gentechnik) wurde im Laufe der Zeit Pichia pastoris als Expressionssystem zunehmend beliebter.[4] Da die Hefe von der US-amerikanischen Zulassungsbehörde, der Food and Drug Administration (FDA), den sogenannten GRAS-Status (generally recognized as safe; generell als sicher eingestuft) erhielt, hat sie sich auch für die Produktion von pharmazeutischen Wirkstoffen etabliert. Dies ist unter anderem dem Umstand zu verdanken, dass krankheitsverursachende Faktoren wie Pyrogene und lysogene Viren in Hefen nicht existent sind.

Aktuell werden m​ehr als 500 rekombinante Proteine (darunter einige pharmazeutische Produkte) i​n P. pastoris kloniert u​nd hergestellt[5]. In d​er folgenden Tabelle werden einige Beispiele für d​ie Expression organismusfremder Proteine i​n Pichia pastoris genannt:

OrganismusProteinFunktion/Wirkung
Säugetier/MenschAnti-HBs Fab-FragmentVorsorge und Behandlung gegen Hepatitis-B-Virus
Säugetier/MenschDopamin D2S RezeptorG-Protein
Säugetier/MenschDNA-Topoisomerase I (hTopo I)DNA-Replikation, -Transkription und Rekombination
Clostridium botulinumClostridium botulinum serotype FAntigen
Escherichia coliPhytaseVerwendung als Ergänzungsmittel für Tierfutter
Thermus aquaticusYT-1 Aqualysin IHitzestabile Serin-Protease
Rhizopus oryzaeLipaseKatalytische Spaltung von Triacylglyceriden
Trametes versicolorLaccase (lcc1)Phenoloxidase
Candida antarcticaCBM–CALB-FusionsproteinLipase
Hevea brasiliensisHydroxynitrile-LyaseIndustrielle Enzyme for Biokatalyse
AmaryllidaceaeSnowdrop AgglutininBindung von D-Mannose Einheiten
Panax ginsengGsp (Panax ginseng C)Potentieller Wirkstoff gegen Diabetes
Oryza sativaAlpha-Amylase (Amy 1A/3D)Stärkehydrolyse
Chondrosia reniformisProlyl-4-hydroxylase (P4H)[6]Hydroxylierung von Prolin in Kollagen[6]

Das Pichia pastoris Expressionssystem

Die Verwertung von Methanol bedingt das Vorhandensein von Proteinen, welche Alkohol in den Stoffwechsel der Hefe einschleusen können. In Pichia pastoris sind dies unter anderem die Alkoholoxidasen I und II (AoxI, AoxII), die als initiale Enzyme Methanol zu Wasserstoffperoxid und Formaldehyd oxidieren. Aber vor allem die Alkoholoxidase I weist eine sehr geringe Affinität für Sauerstoff auf; die Hefe kompensiert diesen Missstand, indem sie große Mengen an AoxI bildet (bis zu 30 % des Zellproteins). Damit dies möglich wird, unterliegt das AOXI-Gen der Kontrolle des sehr starken AOX-Promotors, der nur bei Vorhandensein von Methanol zur Transkription des entsprechenden Gens führt. Daraus ergibt sich ein Promotor, der durch die Zugabe von Methanol induziert werden kann. Unterstellt man nun die Gensequenz eines rekombinanten Proteins der Kontrolle eines AOX-Promotors (meist AOX1), kann in einem Fermentationsprozess die Akkumulierung von Biomasse von der eigentlichen Proteinproduktion getrennt werden, was zumeist angestrebt wird. Erst durch die Zugabe von Methanol als Induktor wird der AOX-Promotor abgelesen und somit auch das rekombinante Protein synthetisiert[7]. Pichia pastoris kann über einen weiten pH-Bereich hinweg kultiviert werden, ohne dass das Wachstum signifikant beeinträchtigt wird. Im Gegensatz zu einigen anderen Hefen, wie Saccharomyces cerevisiae, kann Pichia pastoris zu sehr hohen Zelldichten kultiviert werden. Posttranslationale Modifikationen wie die Ausbildung von Disulfidbrücken oder die Glykosylierung von Proteinen (das Anhängen von spezifischen Zuckerresten) werden von der Hefe durchgeführt. Pichia kann zudem Proteine sehr effizient sezernieren, daher aus der Zelle ausschleusen, was nachfolgende Aufbereitungsschritte (Downstream Processing) erleichtert. In Pichia pastoris zur Anwendung kommende Vektoren, das sind jene genetischen Konstrukte, die das rekombinante Protein tragen, werden meist in das Wirtsgenom integriert.

Glykosylierung und „Humanization“

Vor allem der Glykosylierungsmechanismus von Hefen stellt ein wiederkehrendes Problem bei der Expression humaner, pharmazeutischer Wirkstoffe dar. Gewöhnlich werden in Hefen hergestellte Proteine hypermannosyliert, daher bis zu 200 Mannose-Reste werden daran angefügt (in Pichia pastoris: 8-14 Mannose-Reste). Diese Strukturen weichen in jedem Fall erheblich von der humanen Glykosylierung ab, die von einem komplexeren Typ ist. Sogenannte hypermannosylierte Proteine sind im menschlichen Organismus teilweise funktionsunfähig, können allergische Reaktionen auslösen und weisen eine sehr kurze Halbwertszeit im humanen Serum auf, da sie vor allem von Mannose-Rezeptoren in der Leber gebunden werden.[8] Um vollständig glykosylierte menschliche Proteine auch in einer Hochdichtefermentation mit Pichia pastoris herstellen zu können, wurde in den letzten Jahren an der „Humanization“ (Vermenschlichung) des Glykosylierungsapparates geforscht. Grundsätzlich werden unerwünschte Enzyme des Hefestoffwechsels, die zum Beispiel für die Hypermannosylation verantwortlich zeichnen, entfernt, während Gene, die an der menschlichen Glykosylierung beteiligt sind, mittels rekombinanter DNA-Techniken in den Organismus eingeschleust werden. 2004 konnte so erstmals das Humanprotein Erythropoietin (EPO) in seiner natürlichen, humanen Glykosylierung in einem Pichia pastoris Stamm erzeugt werden.[9][10][11] Das Ziel weiterer Forschungsarbeiten in diesem Bereich ist die Anwendung der Ergebnisse auf andere Expressionssysteme sowie die Steigerung der Expressionsraten.

Literatur
  • Cregg J. (2007): Pichia Protocols (Methods in Molecular Biology). Humana Press; 2. Auflage ISBN 978-1-58829-429-6
  • Gellissen G. (Ed): (2005) Production of recombinant proteins - novel microbial and eukaryotic expression systems. Wiley-VCH, Weinheim ISBN 978-3-527-31036-4

Einzelnachweise
  1. Lotte Burkhardt 2022: Eine Enzyklopädie zu eponymischen Pflanzennamen: Von Menschen & ihren Pflanzen – Berlin: Botanic Garden and Botanical Museum Berlin, Freie Universität Berlin. – https://doi.org/10.3372/epolist2022, Berlin 2022.
  2. Y. Yamada, M. Matsuda, K. Maeda, K. Mikata: The phylogenetic relationships of methanol-assimilating yeasts based on the partial sequences of 18S and 26S ribosomal RNAs: the proposal of Komagataella gen. nov. (Saccharomycetaceae). In: Bioscience, biotechnology, and biochemistry. Band 59, Nummer 3, März 1995, S. 439–444, doi:10.1271/bbb.59.439, PMID 7766181.
  3. C. P. Kurtzman: Biotechnological strains of Komagataella (Pichia) pastoris are Komagataella phaffii as determined from multigene sequence analysis. In: Journal of industrial microbiology & biotechnology. Band 36, Nummer 11, November 2009, S. 1435–1438, doi:10.1007/s10295-009-0638-4, PMID 19760441.
  4. Cereghino J. L., Cregg J. M.; Heterologous protein expression in the methylotrophic yeast Pichia pastoris. FEMS Microbiology Reviews 24 (2000) 45-66
  5. Macauley-Patrick S., Fazenda M. L., McNeil B., Harvey L. M.; Heterologous protein production using the Pichia pastoris expression system. Yeast (2005); 22: 249–270.
  6. Marina Pozzolini, Sonia Scarfi, Francesca Mussino, Annalisa Salis, Gianluca Damonte, Umberto Benatti, Marco Giovine: Pichia pastoris production of a prolyl 4-hydroxylase derived from Chondrosia reniformis sponge: A new biotechnological tool for the recombinant production of marine collagen. Journal of Biotechnology 208, 20 August 2015; S. 28–36. doi:10.1016/j.jbiotec.2015.05.007
  7. https://microbialcellfactories.biomedcentral.com/articles/10.1186/1475-2859-5-17
  8. Neta D.; Asparagine-linked glycosylation in the yeast Golgi. Biochimica et Biophysica Acta 1426 (1999) 309-322.
  9. Hamilton S. R., Gerngross T. U. Glycosylation engineering in yeast: the advent of fully humanized yeast. Current Opinion in Biotechnology 2007, 18:1–6.
  10. Bretthauer R. K. ; Genetic engineering of Pichia pastoris to humanize N-glycosylation of proteins. Trends in Biotechnology 2003, 21:459-462.
  11. Hamilton S. R., Bobrowicz P., Bobrowicz B., Davidson R. C., Li H., Mitchell T., Nett J.H., Rausch S., Stadheim T. A., Wischnewski H.; Production of complex human glycoproteins in yeast. Science 2003, 301:1244-1246.
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